蛋白质-蛋白质相互作用(PPI)研究是生命科学的核心命题。传统IP-MS、酵母双杂交等方法难以捕捉瞬时、弱相互作用,而基于生物素标记的邻近标记(Proximity Labeling)技术,正在重塑蛋白质组学的研究范式。

一、从BioID到TurboID:速度的两次跃迁
BioID(2012年) 利用突变的生物素连接酶BirA*,将生物素活化为生物素AMP(bioAMP),对周围约10 nm半径内的蛋白质进行非特异性生物素化。但BioID需要18-24小时才能完成有效标记,难以追踪动态过程。
TurboID(2018年) 通过定向进化改造BirA,将标记速度提升约15倍——10-30分钟即可完成标记,使活细胞乃至体内实验成为可能。
APEX2 则走另一条技术路线:在H₂O₂存在下将生物素-酚氧化为寿命极短的自由基(<1 ms,标记半径约20 nm),添加H₂O₂后仅需1分钟即可完成标记,是时间分辨率最高的邻近标记工具,但需注意氧化应激风险。
二、2026年突破:STePTag实现活体器官标记
2026年6月,中国科学院化学研究所团队在《德国应用化学》发表STePTag技术,首次将邻近标记从细胞水平跃升至活体器官水平:
| 技术要素 | 设计 |
|---|---|
| 融合构建 | TurboID与大肠杆菌二氢叶酸还原酶(DHFR)融合 |
| 调控开关 | 加入配体TMP后DHFR稳定化,激活TurboID |
| 递送方式 | 脂质纳米颗粒(LNP)递送mRNA至小鼠肝脏,无需转基因动物 |
| 标记速度 | 注射生物素底物后30分钟完成原位生物素化 |
利用该技术,团队在生理条件下鉴定出93种肝脏来源分泌蛋白,并在急性肝损伤模型中捕获40种动态变化的分泌蛋白,解析了醛脱氢酶分泌在药物性肝损伤中的保护机制。
三、技术选型速查
| 应用场景 | 推荐工具 | 理由 |
|---|---|---|
| 活细胞PPI动态研究 | TurboID | 速度快、背景可控 |
| 亚细胞器蛋白质组 | APEX2 | 高时空分辨率 |
| 条件性PPI验证 | Split-TurboID | 相互作用发生时才激活 |
| 活体器官分泌蛋白组 | STePTag | LNP递送、无需转基因 |
| 神经元长轴突标记 | LINCS(seTurboID) | 轴突全程覆盖、信号超亮 |
邻近标记技术的每一次跃迁,背后都离不开高质量生物素探针的支撑——从生物素-酚(BP)、生物素-胺到各类结构定制化的生物素衍生物,探针的纯度与活性直接决定标记效率与数据可信度。
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